Введение. В настоящее время особую актуальность приобретают исследования фотосинтетической активности растений как один из методов изучения стресса растений и его регулирования. Именно фотосинтез является фундаментом первичной биологи­ческой продуктивности в естественных экосистемах и определяющим фактором формирования урожайности в агроценозах. (Андрианова Ю. Е., 2000: 15, 27, 56, 79, 120–133; Мокроносов А. Т., 2006: 5-16, 39-43, 78-90; Ничипорович А.А., Строганова Л.Е., 2006: 2-5; Сальникова И.А., 2021: 137-144). Стресс, вызванный изменяющимися клима­тическими условиями, различными биоген­ными факторами, резкими скачками температурных и водных режимов воздуха и почвы, влияет на скорость фотосинтеза и на содержание хлорофилла в зерне. (Андринова Ю. Е., 2000: 15, 27,56,79,120-133; Мокро­носов А.Т., 2006: 40-58; Семинченко Е.В., 2020: 63-66; Genty B., Briantaies J.-M., Baker N.R., 1989: 87-92; Noskova E., 2020: 6-9). Повреждение фотосинтетического аппарата клетки в результате стрессовых факторов, вызывает в конечном итоге гибель клетки и снижение урожайности культуры. В современных исследованиях широко применятся флуорометрия с применением амплитудно-импульсной модуляции (PAM). (Genty B., Briantaies J.-M., Baker N.R., 1989: 87-92; Noskova E., 2020: 6-9; Erhard Pfündel, 2007: 58).Фотосинтез и дыхание растений являются двумя фундаментальными и важнейшими физиологическими процес­сами, в то время как решающая роль антиоксидантной системы в реакции на абиотические факторы по-прежнему является предметом изучения при исследо­вании физиологического стресса. (Андриа­нова Ю. Е., 2000: 15, 27, 56, 79, 120–133; Мокроносов А.Т., 2006: 40-58; Семинченко Е.В., 2020: 63-66). Фотосинтез и дыхание — два фундаментальных физиологических процесса в растениях: первый включает первичную фиксацию углерода, передачу световой энергии и выделение кислорода, а второй связан с выделением углерода, производством энергии и соответствующим метаболизмом субстратов, таких как те, что обеспечивают углеродный скелет. Они играют ключевую роль в поддержании углеродного баланса. Эти процессы важны для поддержания углеродного поглощения в наземных экосистемах. А также они участвуют в реакции на изменение климата и обратной связи с ним. Изменения климата могут повлиять на ключевые биологические метаболические процессы и их обратную связь. Например, стрессовые факторы окружающей среды могут спровоцировать образование активных форм кислорода (АФК) в хлоропластах (где происходит фотосинтез), в то время как высокий уровень CO2 в будущем может ослабить эти стрессовые факторы. (Андрианова Ю.Е., 2000: 15, 27,56,79,120-133; Мокроносов А.Т., 2006: 5-16, 39-43, 78-90; Ничипорович А.А., Строганова Л.Е., 2006: 25-29; Сальникова И.А., 2021: 106-110; Lisitsyn E., 2020: 3-5; Allorent G., Osorio S., Vu J. L., Falconet D., Jouhet J., Kuntz M., Fernie A. R., Lerbs-Mache S., Macherel D., Courtois F., Finazzi G., 2015: 707-719).Материалы и методы. Целью исследования является оценка влияния биостимуляторов на фотосинтетическую активность и стрессоустойчивость ярового ячменя с использованием биофизических и физиологических методов.Авторы ставили перед собой следующие задачи:• сравнить эффективность различных биостимуляторов роста растений (Эпин-Экстра, Циркон, Гиберелон, Альбит, Рестарт);• оценить влияние обработки на ключевые фотосинтетические параметры.Исследование проводили на растениях ярового ячменя сорта “Нур” в 2022–2023 гг. в условиях Московской области. Почва опытного участка – дерново-подзолистая среднесуглинистая с содержанием гумуса – 2,1%, фосфора – 28,8 мг/100 г почвы, калия – 10,1 мг/100 г почвы, азота – 0,83 мг/ 100 г почвы.При проведении предпосевной обработки семян ярового ячменя было проведено разделение на 6 групп со своим вариантом обработки:1. Контроль (обработка водой);2. Эпин-Экстра, Р (200 мл/т);3. Циркон, Р (2 мл/т);4. Гиберелон, ВРП (80 г/т);5. Альбит, ТПС (30 мл/т);6. Рестарт, Ж (0,3 мл/т).Предпосевная обработка семян проводилась при расходе рабочего раствора 10 л/т. Обработка растений по вегетации осуществлялась двукратно: в фазе кущения (ВВСН 23) и в фазе начала выхода в трубку (ВВСН 30). Расход рабочей жидкости - 200 л/га.В экспериментах по изучению устойчивости к стрессу у растений ячменя использовалась флуориметрическая техника PAM-2100. Измерения листьев выполнялись с помощью специального держателя-клипсы 2030-B для листьев, оснащенного микроквантовым датчиком и термопарой Ni-CrNi. Свет измерялся с помощью крошечного диффузора (~ 1 мм). Содержание хролофилла определялось с помощью спектрофотометра UNICO 2100.Результаты. В научной литературе часто упоминаются установленные данные о том, что сам процесс фотосинтеза служит одной из основных защитных систем растения от стрессовых факторов и, как следствие, важным условием для получения высококачественного урожая. При этом многие ученые обращают внимание на то, что при увеличении листовой поверхности, поглощение солнечной энергии также увеличивается, а сам процесс фотосинтеза ускоряется. (Адрианова Ю.Е., 2000: 46-47; Корнеев Д.Ю., 2002: 124; Lisitsyn E., 2020: 3-5; Noskova E., 2020: 6-9; Allorent G., Osorio S., Vu J. L., Falconet D., Jouhet J., Kuntz M., Fernie A. R., Lerbs-Mache S., Macherel D., Courtois F., Finazzi G., 2015: 707-719).Настоящее исследование включало в себя изучение показателей фотосинтеза, составляющих основу активного процесса фотосинтеза.В таблице 1 представлены данные по измерению максимальной площади листьев ярового ячменя.Таблица 1. Максимальная площадь листьев, (тыс. м2/га)Table 1. Maximum leaf area (thousand m2/ha)Вариант2022(ГТК 1,1)2023(ГТК 1,4)Среднееза 2 годаобработка семянКонтроль27,531,829,7Эпин-Экстра31,834,933,4Циркон31,635,633,6Гиберелон31,135,433,3Альбит32,436,534,5Рестарт30,533,131,8обработка растенийКонтроль35,736,736,2Эпин-Экстра36,938,137,5Циркон36,438,037,2Гиберелон35,937,736,8Альбит36,738,237,5Рестарт35,837,536,7НСР051,932,26- В процессе анализа полученных данных был сделан вывод о том, что уменьшение в контрольном варианте площади листьев на 7,1–16,2% при обработке семян, и на 1,4–3,6% при обработке растений, связано с положительным действием стиму­лирующих препаратов. Максимально высокие показатели отмечены для препара­тов Эпин-Экстра и Альбит с площадью листьев 37,5 тыс. м2/га (на контроле - 36,2 тыс. м2/га). Тенденция к увеличению площади листьев наблюдается во всех опытных вариантах с исследуемыми препа­ратами.Фотосинтетический потенциал (ФП) вырос на 4,4–14,3% во всех опытных вариантах с исследуемыми препаратами, что отражено в таблице 2.Таблица 2. Фотосинтетический потенциал, (тыс. м2/га*дн.)Table 2. Photosynthetic potential (thousand m2/ha*day)Вариант2022(ГТК 1,1)2023(ГТК 1,4)Среднееза 2 годаобработка семянКонтроль967,01058,61012,8Эпин-Экстра1068,01158,71113,4Циркон1089,11222,11155,6Гиберелон1059,91065,31062,6Альбит1107,61007,71057,7Рестарт1055,01094,81074,9обработка растенийКонтроль1230,71376,21303,5Эпин-Экстра1359,31506,31432,8Циркон1386,11589,71489,4Гиберелон1348,91384,91366,9Альбит1470,01423,21446,6Рестарт1409,71310,11359,9НСР0558,459,2- Максимальное значение ФП (1489,4 тыс. м2/га*дн.) зафиксировано для варианта с препаратом Циркон. Остальные вари­анты с биостимуляторами также показали положительную динамику в сравнении с контролем.Чистая продуктивность фотосинтеза (ЧПФ) представлена в таблице 3.Таблица 3. Чистая продуктивность фотосинтеза, (г/м2*дн.)Table 3. Net productivity of photosynthetic processes, (g/m2*day)Вариант2022(ГТК 1,1)2023(ГТК 1,4)Среднееза 2 годаобработка семянКонтроль6,15,45,8Эпин-Экстра6,95,76,3Циркон7,35,96,6Гиберелон7,15,86,5Альбит6,95,96,4Рестарт6,25,35,8обработка растенийКонтроль6,75,15,9Эпин-Экстра7,45,46,4Циркон7,25,76,5Гиберелон7,35,56,4Альбит7,45,56,5Рестарт7,25,36,3НСР055,35,7- ЧПФ экспериментальных образцов нарас­тала на 6,8–10,2% в сравнении с необрабо­танными фрагментами опыта. Фитогормон Гиберелон и индуктор роста Циркон пока­зали максимальную эффективность в срав­нении с остальными препаратами, а ЧПФ выросла до значения 6,5 и 6,6 г/м2*дн., соответственно. Аналогичные показатели обозначены у антистрессового биопрепа­рата Альбит.В работе фотосистемы ФС2 также есть не­значительные колебания, но для достовер­ности результатов, данный эксперимент будет продолжен и далее (Рис.1). Рисунок 1. Изменение доли световой энергии, используемой PS II в процессе электронного транспорта (Y(II)), 2022–2023 гг.Figure 1. Change in the share of light energy used by PS II in the electron transport process (Y(II)), 2022-2023.  Рисунок 2. Содержание хлорофилла в листьях ярового ячменяFigure 2. Chlorophyll content in spring barley leaves В эксперименте с флуоресценцией активных различий не выявлено. Однако стоит отметить, что природный антистрес­сор Эпин-Экстра показал положительную динамику в сравнении с остальными препа­ратами и контролем. В данной части экспе­римента важно учитывать все механизмы действия препаратов, и детально углубиться в этот вопрос. ETR 114,9 ммоль/электро­нов/м2с, что превышает контрольный на 0,3 ммоль/электронов/м2с.Анализ динамики содержания хлорофилла в листьях ярового ячменя позво­лил установить факт, что при смене фаз от начальной ВВСН 13 до ВВСН 27 содержание хлорофилла снижается вследствие роста растения и дальнейшего перехода из зеленого растения в активный рост зерновки. Набольшее значение хлорофилла (4.39 мг/л) установлено в фазу 3 листьев (ВВСН 13). Данное значение превышает контроль на 4,5%. Далее, по росту фаз растений, содержание хлорофилла снизилось в среднем по всем вариантам исследования на 28,1%.Обсуждение. Обработка семян и расте­ний во время вегетации биостимуляторами роста способствует: росту листьев растения; стимуляции активной работы фотосинтетического аппарата растений;повышению содержания хлорофилла;защите от стрессовых факторов.Это приводит к максимизации фотосинтетической активности растения и, как следствие, повышению продуктивности и качества урожая.